Данный метод основан на использовании микрокамер (Дунин, 1937), спороносящей в искусственных условиях расы A. solani и природной популяции A. alternata. Метод предусматривает заражение нетравмированных растений в поле и создание оптимальных условий для развития болезни в лаборатории.

Приготовление инокулюма и заражение проводятся следующим образом. Суспензия конидий и мицелия A. solani и A. alternata готовится в день проведения заражения с концентрацией конидий не ниже 4-5х10³ в 1 мл суспензии. Капля инокулюма наносится на нижнюю сторону этикетированных листьев и накрывается микрокамерой. Через 24 часа камеры снимаются. Ежедневно в поле ведется наблюдение за длиной инкубационного периода. На 4-ый день инфицированные листья вместе с этикетками срываются и переносятся во влажные камеры. Результаты заражения проверяются на 7-й день. Учитываются диаметр поражения (мм), интенсивность спороношения по 3-балльной шкале (1 – слабое, 2 – среднее, 3 – сильное спороношение) и длина инкубационного периода (сутки).

На основании полученных показателей определяется индекс поражения по приведенной выше формуле (1). Сорта в зависимости от величины индекса поражения дифференцируются по степени устойчивости (таблица 4).

Лабораторно-полевой метод определения устойчивости сортов картофеля к альтернариозу позволяет объективно охарактеризовать независимо от метеорологических условий основные формы ее проявления: устойчивость к проникновению патогенов, связанную с физиологическим состоянием растения-хозяина, распространению их в тканях и к спороношению, а также продолжительности инкубационного периода.

Таблица 4 – Степень устойчивости картофеля в зависимости от индекса поражения.

 

Индекс поражения	Степень устойчивости
0-5,0	высокая
5,1-10,0	относительно высокая
10,1-20,0	средняя
20,1-30,0	низкая
свыше 30,0	очень низкая